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ATAC-Seq 實驗操作指南---04 常見問題及解決方案 05 明星產品

時間:2025/1/9閱讀:621
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文庫產出低,該不該上機?

樣本丟失:細胞離心后在EP管中幾乎不可見,棄去上清液時容易造成丟失。建議在細胞離心過程中,將EP管統一方向并標記細胞沉積位置,在沉淀對立面輕輕棄去上清,實驗操作過程中避免劇烈渦旋振蕩。

不需要很糾結文庫產出,能夠達到上機標準的產出,且文庫峰型符合ATAC文庫峰型,便可以上機測序。增加擴增循環數,反而會導致dup 偏高。

 

ATAC文庫在進行質檢時,文庫呈現什么樣的分布是正常的分布?

轉座酶會容易與核小體間隔部分的DNA接觸,發生打斷反應。構建成功的ATAC文庫在2100峰圖上會呈現明顯的核小體的pattern特征峰,其中:

第一個在180-200bp的位置,屬于核小體之間的區域(40136bp

第二個在300-400 bp

第三個在500bp左右

如果有第四個會在700bp附近

核小體全長一般在180200 bp,平均200 bp。其中,140bp是直接盤繞在組蛋白八聚體核心外面,這些DNA不易被核酸酶消化;其余為核小體間區。不同組織、細胞,同一細胞染色體的不同區段,盤繞在組蛋白八聚體核心外面的DNA長度是不同的,如:真菌的可短至154bp、海膽精子的可長達260bp

 

培養細胞進行ATAC-seq時支原體污染嚴重,使用支原體清除劑后,細胞是否能夠繼續進行建庫?

支原體是原核生物,DNA呈裸露狀態,當細胞被支原體感染,進行ATAC-seq實驗時,裸露的DNA會被切割,擴增。使用支原體清除劑清除后,仍會有DNA殘留,進行ATAC-seq實驗捕獲的開放區域占比少。存在污染時,污染會被放大。

 

Mapping 率低的原因與排查方案?

細胞培養或取樣過程中,有時會出現樣本被外源微生物污染的情況。ATAC建庫基于Tn5轉座酶切斷開放DNA,而微生物基因組暴露程度高,相較真核宿主基因組更易發生轉座反應。即使少量微生物污染,在所得文庫中也會占據較大比例。

可以從以下方面進行排查:確認細胞培養或實驗過程中有無污染;確認參考基因組是否選擇正確;分析unmapping數據比對的物種類型。

 

Dup Rate 值偏高分析

Dup Rate一般與建庫中的PCR循環數相關。

①PCR擴增帶有一定的偏好性和錯配率,會影響最終形成文庫的覆蓋度和測序準確性;

②PCR本身對于不同GC含量的樣本的擴增效率是不同的,PCR循環越多,擴增困難和擴增容易的片段之間相差就會越大,對應的分子多樣性就會越低,dup就會增大;

③PCR本身在擴增的過程中可能會產生一些堿基的錯配,錯誤的擴增可能會到出現與現有相同基因的結果,導致dup值升高。因此無需為獲得更高的文庫產量而設置過高的擴增循環數。

 

轉錄起始位點(TSS)附近的信號分布

轉錄活躍的基因的TSS往往處于開放狀態,以保證轉錄因子可以結合。所以,NFR fragments(開放染色質中兩個核小體之間的LinkerDNA片段)應該富集在轉錄起始位點(TSS)附近(圖中黑色實線),而結合核小體的區域在TSS位置應該缺失且在TSS兩側相對富集(圖中紅色虛線)。

ATAC-seq 文庫是否可以兼容華大平臺測序?怎么做?

ATAC文庫可以兼容 Illumina和 MGI測序,且已驗證所分析的下機數據結果一致。

上機測序方案:ATAC文庫構建后,使用轉化試劑轉化為華大文庫,隨后進行環化上機。

測序策略:推薦使用PE150。PE150為雙端測序,SE50為單端測序,由PE150測序所獲得的有效片段信息較SE50更多,因此獲得的數據更優。

 

05 明星產品

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