材料與儀器
Wistar大鼠
亞（石西）酸鈉 腐胺 轉鐵蛋白 胰島素 甲狀腺素 黃體酮 谷氨酰胺 小牛血清 兔抗鼠GC抗體
眼科剪 滴管 離心機 培養皿 CO2培養箱
步驟
一、實驗步驟
1. 取新生2 d 的Wistar大鼠10 只，無菌條件下取出雙側視神經。
2. 接種至24孔培養板內經多聚賴氨酸處理的蓋玻片上。
3. 加入含30g·L-1 小牛血清的DMEM/F12 培養基，37℃，50mL/L CO2，100%濕度連續培養3 d 。
4. 3 d 后棄廢液，改為含 5g·L-1 小牛血清DMEM/F12 條件培養液繼續培養。
5. 每周換液2次。在獲得足夠的細胞數量后，改用無血清條件培養液繼續培養，每2 d 換液一次。
二、形態學觀察
每天在倒置顯微鏡，觀察培養細胞的生長過程和形態學變化并拍照。
三、免疫細胞化學鑒定
1. 將含細胞蓋玻片取出，0.01 mol·L-1 PBS沖洗3 次x5 min。
2. 冷丙酮固定10 min。
3. PBS沖洗(3 次x5 min)。
4. 30g·L-1 過氧化氫室溫孵育15 min。
5. PBS沖洗3 次x5 min。
6. 滴加正常山羊血清，室溫孵育20 min。
7. 滴加1:100 GC抗體，陰性對照以PBS代替一抗，37℃孵育60 min。
8. PBS沖洗3 次x5 min。
9. 滴加 生物素標記羊抗兔IgG，37℃，20 min。
10. PBS沖洗3 次x5 min。
11. 滴加辣根酶標記鏈酶卵白素工作液。
12. DAB工作 液顯色，自來水終止反應。
13. 脫水，透明，DPX封片保存。
四、結果
1. 形態學觀察結果
組織塊24 h 開始貼壁，48～72 h 可見神經組織邊緣游出少量細胞，主要為圓形或梭形(圖 1)。8～9 d 左右，細胞基本鋪滿培養孔。此時改用無血清條件培養基培養進行純化。培養過程中，部分細胞死亡。12 d 左右獲得的細胞胞體基本為呈圓形或多角型，直徑約 6～10μm。細胞核較大，胞質少(圖 2)。
2. 免疫組織化學染色結果
培養的視神經少突膠質細胞的免疫組織化學染色 GC 蛋白陽性，未加一抗的呈陰性。染色結果顯示成熟的少突膠質細胞突起豐富，互相形成蜘蛛網狀(圖 3)。蘇木素復染，異質細胞較少，90%以上為陽性細胞(圖 4)。
Figure 1 Cells migrated from optic nerve tissue at the third day (10x10)
圖 1. 培養第 3 天，細胞自視神經遷出 (10x10)
Figure2 Purified oligodendrocytes of optic nerve at the fifteenth day (10x40)
圖 2. 培養第 15 天，純化的視神經少突膠質細胞(10x40)
Figure 3 Positive expression of GC in oligodendrocytes at the seventh day (10x20)
圖 3. 培養第 7 天，少突膠質細胞 GC 陽性表達 (10x20)
Figure 4 Positive expression of GC in purified oligodendrocytes at the fifteenth day (hematoxylin staining) (10x20)
圖 4. 培養第 15 天，純化的少突膠質細胞 GC 陽性表達(蘇木素復染)(10x20)
