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成纖維細胞的分離方法

時間:2021/11/16閱讀:1653
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步驟

1) 胚胎的分離。

適用哺乳動物(倉鼠、小鼠和大鼠)

a. 采用認可的方案處死嚙齒動物。

b. 立即在無菌超凈臺內用 70% 乙醇擦洗整個動物。若可能,置紫外燈下照射 5 分鐘。

c. 用無菌的鑷了和剪子在前腿下作一腹部水平切口,用無菌鑷子將皮膚扯向后腿。

d. 用另一無菌的剪刀和鑷子切開腹部,取出含有胚胎的子宮,置于無菌的培蕎皿上。

e. 剔除胚胎周圍的包膜,將胚胎放于無菌的含有無菌 PBS 的燒瓶中。

f. 漂洗胚胎,去掉 PBS。繼續用 PBS 漂洗胚胎直至清洗液清亮為止。

適用雞胚胎

a. 用 70% 乙醇擦洗雞蛋殼。

b. 用無菌剪刀輕敲雞蛋的圓端,輕輕去除蛋殼露出氣囊。

c. 用無菌攝子去除覆蓋于絨毛尿囊上的白膜。

d. 剪開包膜,用彎鑷夾住胚胎頸部取出胚胎。

e. 棄頭部,將無頭的胚胎置于廣口燒杯中,用 PBS 漂洗。

2) 將 6~8 個胚胎轉移至一個小的無菌廣口燒杯屮,用新的無菌剪刀小心地絞碎胚胎,

用 PBS 漂洗。

3) 在無菌狀態下,將絞碎的胚胎轉移于一 500 ml 的無菌的有攪拌棒的燒杯中,加人

200~300 ml 用 HBSS 配制的 0.25% 的無菌胰蛋白酶(CIBCO/BRL)。

4) 在溫暖的環境中或置于 37°C 培養箱中輕輕攪動 15 分鐘。

5) 讓存留的組織塊在重力作用下慢慢沉降,將含冇懸浮細胞的液體轉移至一無菌大容積的離心管中,該管內按照每 10 ml 上清加人 1 ml 牛血清的比例加人牛血淸以滅活胰蛋白酶。

6) 加人新鮮胰蛋白酶溶液(見前述步驟)于含有殘留未消化組織塊的 500 ml 燒杯中,重復步驟 4 和 5。

7) 離心混合的細胞懸液,1200r/min,5 分鐘,棄上清。

8) 用新鮮的無菌 PBS 重懸沉淀的細胞,按步驟 7 再次離心。

9) 用 PBS 反復洗滌細胞至上清清亮為止。

即用含有 10% 牛血清和抗生素(如青霉素、鏈霉素)的 DMEM(CIBCO/BRL)10 ml 再懸沉淀,并使終體積為 100 ml。

11) 讓殘留的大塊未破碎的組織或特殊顆粒物質沉降。

可采用數層無菌紗布過濾細胞懸液以去除任何殘留的細胞塊。

12) 為確定現有細胞濃度,加人 0.2 ml 細胞懸液于 1.8 ml1% 醋酸溶液中以裂解紅細胞,用血細胞計數器進行細胞計數(見第 2 節中的"細胞計數")

13) 按每 10 mm 平皿 1x107 至 4x107 細胞的數量接種于 10 ml 組織培養液中,在飽和濕度的 C02 培養箱中孵育直至細胞鋪滿。

14) 當細胞長滿后,去除培養液,用 10% 的溫暖的 Versene(用 PBS 配制的 0.53 mmol/L EDTA,GIBCO/BRL) 洗滌細胞層 2 次。

15) 棄 Versene,加人相同體積的溫暖化 0.05% 胰蛋白酶-EDTA(GIBCO/BRL)

16)37°C 孵育 5 分鐘

17) 用無菌吸管輕輕吹散細胞,并轉移至一含 1~2 ml 牛血清的無菌管中。

18) 離心,1200/min,5 分鐘,棄上清。

19) 再懸沉淀于 5 ml 培養液屮(見上文),另加人 15 ml 培養液,分裝于 2 個 100 mm 平皿中。

20) 置 37°C 飽和濕度的 C02 培養箱中培養細胞,直至細胞長滿,繼續步驟 14~20 以傳代細胞。


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