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Caspase 1活細胞凋亡檢測試劑盒（綠色）

產品描述
　　活細胞凋亡檢測試劑盒基于半胱天冬酶的熒光抑制劑。這些抑制劑具有細胞滲透性和非細胞毒性。一旦進入細胞，半胱天冬酶抑制劑與活性半胱天冬酶共價結合。 Caspase-1主要參與促炎細胞因子的激活和細胞凋亡過程。已經證明胱天蛋白酶1對肽序列Tyr-Val-Ala-Asp（YVAD）具有底物選擇性。該試劑盒使用FAM-YVAD-FMK作為半胱天冬酶1活性的熒光指示劑。 FAM-YVAD-FMK在凋亡細胞中不可逆地結合活化的半胱天冬酶1。一旦與半胱天冬酶1結合，熒光試劑保留在細胞內。結合抑制胱天蛋白酶1但不會阻止細胞凋亡的進行，有多種參數可用于監測細胞凋亡。
產品優勢
　　這種試劑盒旨在通過測量活細胞中的caspase 1活化來檢測細胞凋亡。它用于定量凋亡細胞中活化的半胱天冬酶1活性，或用于篩選半胱天冬酶1抑制劑。綠色標記試劑FAM-YVAD-FMK允許通過熒光顯微鏡，流式細胞儀或熒光酶標儀直接檢測凋亡細胞中活化的半胱天冬酶1。該試劑盒為所有必需組分提供優化的分析方案。
訂購信息

產品組分

實驗方案
1.用密度為5×105到2×106個細胞/ mL的測試化合物制備細胞。
2.將FAM-YVAD-FMK以1：150的比例加入到細胞溶液中。
3在室溫下孵育1小時。
4.將細胞沉淀，用緩沖液或生長培養基洗滌并重懸細胞。
5.在Ex / Em = 490 / 525nm處分析細胞。
【注】：使用前將所有部件在室溫下解凍。
操作步驟
1.根據您的特異性誘導方案，將細胞培養至適于細胞凋亡誘導的密度，但不超過2 x 106個細胞/ mL。同時，對于每種標記條件，以與誘導群體相同的密度培養非誘導的陰性對照細胞群。以下是一些誘導懸浮培養細胞凋亡的例子：
（1）用2μg/ ml喜樹堿處理Jurkat細胞3小時。
（2）用1μM星形孢菌素處理Jurkat細胞3小時。
（3）用4μg/ ml喜樹堿處理HL-60細胞4小時。
（4）用1μM星形孢菌素處理HL-60細胞4小時。
【注】：應對每個細胞系進行單獨評估，以確定誘導細胞凋亡的合適細胞密度。
2.通過向FAM-YVAD-FMK（組分A）的小瓶中加入50μLDMSO制備150X FAM-YVAD-FMK DMSO儲備溶液。
3.將150×FAM-YVAD-FMK DMSO儲備溶液（來自步驟1）以1：150的比例添加到細胞溶液中，并將細胞在37℃，5％CO 2培養箱中孵育1小時。
【注1】：對于FAM-YVAD-FMK標記，細胞可以濃縮至~5×10 6個細胞/ mL。未使用的150X FAM-YVAD-FMK DMSO儲備溶液應分為單次使用的等分試樣并儲存在 -20 ℃。
【注2】：對于粘附細胞，用0.5mM EDTA輕輕提起細胞以保持細胞完整，并在用FAM-YVAD-FMK孵育之前用含血清的培養基洗滌細胞一次。
【注3】：適當的孵育時間取決于所用的細胞類型和細胞濃度。優化每個實驗的孵育時間。
4.將細胞以約200g旋轉5分鐘，并用1mL洗滌緩沖液（組分B）洗滌細胞兩次。將細胞重懸于所需量的洗滌緩沖液中。
【注1】：FAM-YVAD-FMK是熒光的，因此清除任何未結合的試劑以消除背景非常重要。
【注2】：對于分離的細胞，應將細胞濃度調節至每個微量滴定板孔中2-5×10 5個細胞/100μL等分試樣，用于步驟6。
5.如果需要，用DNA染色標記細胞（如用于死細胞的碘化丙錠，或用于細胞核染色的整個群體的Hoechst）。
6.通過熒光顯微鏡，流式細胞儀或熒光酶標儀在Ex / Em = 490 / 525nm處檢測熒光強度（對于碘化丙錠，Ex / Em = 535/635 nm;對于Hoechst染料，Ex / Em = 350 / 461納米）。
（1）對于流式細胞儀，使用FL1通道監測熒光強度（FL2通道用于碘化丙錠染色）。
（2）用于熒光顯微鏡和熒光酶標儀。將100μL細胞懸浮液置于96孔黑壁/微量滴定板透明底部的每個孔中。
【注】：如果需要平衡細胞濃度，調整誘導細胞的懸浮體積以接近非誘導細胞群的細胞密度。如果您的細胞治療不會導致受刺激細胞群數量的顯著損失，則此調整步驟是可選的。
（3）使用FITC通道在熒光顯微鏡下觀察細胞（用于碘化丙啶染色的TRITC通道，用于Hoechst染色的DAPI通道）。
（4）使用熒光酶標儀，使用Ex / Em = 490 / 525nm（在515nm處截止）底部讀取模式監測熒光強度。
注意事項
該產品*于科學實驗研究使用，不得用于臨床診斷、治療等領域。