脂質過氧化是脂類的氧化降解過程，其主要由活性氧類（ROS）引發。脂質過氧化傳感器（Lipid Peroxidation Sensor）是通過一種 C11-BODIPY 581/591 試劑的氧化來檢測活細胞中的脂質過氧化情況。 C11 BODIPY 581/591 本質上是一種親脂熒光染料，具有良好的光穩定性、低熒光偽影特質，能積累在膜內。 一旦染料的多不飽和丁間二烯基被氧化，熒光最大發射波長峰值從約 ～590 nm 偏移至約 ～510 nm，活細 胞的熒光從紅色變為綠色，但仍維持親脂性，從而反映膜的脂質過氧化水平。這種傳感器通常用于熒光顯 微鏡和流式細胞分析中，可視化監測脂質 ROS 的生成和動態變化。
測定原理
LPO在酸性條件下加熱，產生小分子終產物 MDA，MDA與TBA，生成紅色產物，在 535nm有最大吸收峰。
使用方法
1. 流式細胞分析：
(1) 懸浮細胞：800 g 離心5 min 收集細胞沉淀；隨后PBS 洗滌細胞兩遍。
(2) 貼壁細胞：棄培養液，用常溫PBS 或培養液輕洗細胞2 次，隨后胰酶消化，800g 離心5 min 收集細胞沉淀，隨后PBS 洗滌細胞兩遍，每個樣本收集1~5 ×105 個細胞?！咀ⅰ浚翰僮鬟^程中輕柔吹打細胞，消化時間不宜過長，劇烈吹打或胰酶消化過度會影響實驗結果。
(3) 脂質過氧化傳感器用于脂質過氧化檢測的推薦濃度為終濃度5μM；配制方法：用新鮮空白培養液配制終濃度為5μM 的脂質過氧化傳感器染色液待用，DMSO 含量≤5‰?！咀ⅰ浚涸摬讲僮鹘ㄗh在消化細胞前準備好，以免細胞消化后久置影響實驗結果。
(4) 將事先配置好的脂質過氧化染色液加入收集的細胞沉淀中，推薦體積為500μL，隨后置于37℃孵箱，染色30min，期間5-10min 間隔輕彈細胞使其懸浮保證染色更充分。
(5) 染色結束后，800 g 離心5 min，棄上清，隨后用PBS 清洗細胞2 次，加入200μLPBS 重懸細胞用于流式分析。
2. 原位成像：
(1) 接種適當密度的細胞于20mm 規格的蓋玻片上（也可用共聚焦小皿替代），給予實驗藥物處理適當時
(1)間后，吸去培養液，用PBS 洗滌細胞一遍；加入500 μL 配制好的脂質過氧化染色液，于37℃染色30min；配制方法參考流式分析中的染色液配制。
(2) 棄培養液，PBS 洗滌細胞兩遍后于熒光顯微鏡或激光共聚焦下進行成像檢測。細胞在染色后應在1 h
(2)之內完成檢測。
檢測條件
該分子探針在還原狀態下最佳激發波長為 581 nm, 發射為 591nm；被 Lipid ROS 氧化后最佳激發波長 為 500 nm，發射在 510nm。因此，在流式分析中檢測通道為 FL1-A；激光共聚焦檢測：氧化態激發波長可 選 488nm（FITC）通道；還原態激發波長可選 561 nm（TRITC）通道。
注意事項
1、臨用前注意試劑二是否溶解，如未溶解，可以 70℃-90℃加熱，并振蕩以促進溶解。
2、使用前小心離心數秒取用，需佩戴手套操作，注意避免與皮膚、眼睛和黏膜接觸。
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