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線粒體呼吸鏈復合物 V 活性光譜法定量檢測試劑盒產品說明書(中文版)

時間:2014/3/31閱讀:3374
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YIJI 線粒體呼吸鏈復合物 V 活性光譜法定量檢測試劑盒產品說明書(中文版)
主要用途
YIJI 線粒體呼吸鏈復合物 V(F0F1-ATP 酶/ATP 合成酶)活性光譜法定量檢測試劑是一種旨在使用丙
酮酸激酶和乳酸脫氫酶連續循環法反應系統,測定與 ATP 合成對應的 ATP 水解產生 ADP 過程中,伴隨的
還原型煙酰胺腺嘌呤二核苷酸(NADH)氧化后吸光峰值的降低,即采用光譜法測定樣品中酶活性的
而經典的技術方法。該技術由大師級科學家精心研制、成功實驗證明的。其適合于各種純化線粒體樣品(動
物、人體、酵母)以及細胞或組織裂解懸液樣品的 F0F1-ATP 酶/ATP 合成酶的特異性活性檢測。可用于心
肌、能量代謝、蛋白組學、病理生理學、神經病變等研究。產品不含污染性蛋白酶,嚴格無菌,即到即用,
操作簡捷,性能穩定,反應優化,檢測敏感。
技術背景
線粒體呼吸鏈復合物V,通常稱為ATP合成酶(ATP synthase) F型ATP酶 type ATPase)、(F和F1F0 ATP酶(F1F0
ATPase),是線粒體氧化磷酸化的*反應。其分子量為500KD,含有十六個亞單位,其中兩個:ATP酶6
和8為線粒體DNA編碼的。ATP酶主要有兩個結構域:F0為質子通道,由幾個膜蛋白構成,包括a、b、c、d、
e、F6、A6L、OSCP(oligomycin sensitive conferring protein)等;和F1催化活性結構域,由水溶性的α3β
3γδε蛋白構成。其zui特征性的酶活性是寡霉素敏感的ATP合成酶。復合物V的主要功能在于產生大部分
細胞所需的能量ATP。ATP的合成需要線粒體內膜電子傳遞到氧分子時,呼吸鏈蛋白所產生的質子梯度變化。
質子通過F0結構域傳遞到基質,激活F1催化活性結構域,促使ATP合成。該酶異常會導致心肌和神經系統
疾病。基于ATP,在寡霉素參與下,受到F1F0 ATP酶的水解,進而通過丙酮酸激酶(pyruvate kinase;PK)
和乳酸脫氫酶(lactate dehydrogenase;LDH)反應系統中,還原型煙酰胺腺嘌呤二核苷酸(reduced nicotinamide
adenine dinucleotide;NADH)轉化為氧化型煙酰胺腺嘌呤二核苷酸(nicotinamide adenine dinucleotide;NAD),
產生的吸光峰值的變化(340nm),來定量分析F1F0 ATP酶活性。其反應系統為:
產品內容
YIJI 緩沖液(Reagent A)
YIJI 反應液(Reagent B)
YIJI 陰性液(Reagent C)
YIJI 底物液(Reagent D)
YIJI 專性液(Reagent E)
產品說明書
毫升
毫升
毫升
微升
微升
1份
保存方式
保存在-20℃冰箱里,避免反復凍融;YIJI 反應液(Reagent B),避免光照,有效保證 6 月
用戶自備
比色皿:用于光譜分析的容器
1

分光光度儀:用于光譜分析
培養箱:用于孵育反應物
實驗步驟
實驗開始前,將-20℃冰箱里的試劑盒中的試劑溶液置入冰槽里融化;YIJI 反應液(Reagent B)注
意避光。然后進行下列操作。
一、 測定準備
1. 準備好待測樣品(例如純化線粒體樣品等),置于冰槽里(注意:檢測前溶解線粒體;參見注意事項 4)
2. 設定好分光光度儀(溫度為 30℃):波長為 340nm,間隔 30 秒,讀數 11 次(共 5 分鐘),并置零
二、 背景對照測定
1. 移取 xx 微升 YIJI 緩沖液(Reagent A)到新的比色皿
2. 加入 xx 微升 YIJI 反應液(Reagent B)
3. 加入 xx 微升 YIJI 底物液(Reagent D)
4. 放進 30℃培養箱里孵育 3 分鐘
5. 加入 xx 微升 YIJI 陰性液(Reagent C)
6. 上下傾倒數次,混勻(限定在 3 秒之內)
7. 即刻放進分光光度儀檢測,此為背景空對照:340 波長讀數 0 分鐘 -340 波長讀數 1 分鐘或 5 分鐘
三、 樣品總活性測定
1. 移取 xx 微升 YIJI 緩沖液(Reagent A)到新的比色皿
2. 加入 xx 微升 YIJI 反應液(Reagent B)
3. 加入 xx 微升 YIJI 底物液(Reagent D)
4. 放進 30℃培養箱里孵育 3 分鐘
5. 加入 100 微升待測樣品(注意:10 微克總線粒體蛋白;樣品須溶解;參見注意事項 4)
6. 上下傾倒數次,混勻(限定在 3 秒之內)
7. 即刻放進分光光度儀檢測,此為樣品總活性讀數:340 波長讀數 0 分鐘 -340 波長讀數 1 分鐘或 5 分鐘
四、 樣品非特異活性測定
實驗開始前,移取 100 微升待測樣品(注意:10 微克總線粒體蛋白;樣品須溶解;參見注意事項 4)到 1.5
毫升離心管,加入 xx 微升 YIJI 專性液(Reagent E),混勻后,放進 30℃培養箱里孵育 15 分鐘。然
后置于冰槽里備用
1. 移取 xx 微升 YIJI 緩沖液(Reagent A)到新的比色皿
2. 加入 xx 微升 YIJI 反應液(Reagent B)
3. 加入 xx 微升 YIJI 底物液(Reagent D)
4. 放進 30℃培養箱里孵育 3 分鐘
2

5. 加入 120 微升上述預處理的待測樣品
6. 上下傾倒數次,混勻(限定在 3 秒之內)
7. 即刻放進分光光度儀檢測,此為樣品非特異活性讀數:340 波長讀數 0 分鐘 -340 波長讀數 1 分鐘或 5 分鐘
五、 計算樣品活性
1)樣品活性(總活性和非特異活性)
【(樣品讀數-背景讀數)X 1(體系容量;毫升)X 樣品稀釋倍數】÷【0xx(樣品容量;毫升)Xxx(毫
摩爾吸光系數 X 1 或 5(反應時間,分鐘)】=單位/毫升÷(樣品蛋白濃度)毫克/毫升=單位/毫克
單位=微摩爾 NADH/分鐘
2)樣品特異活性
樣品總活性測定-樣品非特異活性測定=樣品特異活性
注意事項
1. 本產品為 21 次操作(10 個樣本),包括 1 次背景對照
2. 操作時,須戴手套
3. 系統操作過程中,背景測定只需 1 次
4. 線粒體樣品檢測前,須溶解;建議超聲處理(20 秒 X 3 循環;50%功率)或凍存融解(-70℃至 37℃)
循環 3 次或使用 YIJI 線粒體溶解試劑盒-GMS10018
5. 建議線粒體懸液使用 0.25 M SUCROSE 和 2 mM EDTA,pH9.0;忌用磷酸緩沖溶液
6. 建議使用線粒體裂解懸液,而不是細胞裂解懸液。如果使用細胞裂解懸液,*須澄清;第二須加 50
微克
7. 加入樣品后 3 秒內即刻光譜測定
8. 反應 1 分鐘后光譜測定值趨于穩定;測定值由高到低變化;測定可以持續 5 分鐘
9. 測定值由高到低變化,即 0 分鐘測定讀數高于 1 分鐘或 5 分鐘測定讀數,表明有酶活性
10.光譜測定后,比色皿須清洗*
11.建議待測樣本線粒體蛋白濃度為 10 微克/100 微升;如果樣本酶活性過低或過高,則可以增加或降低樣
本量;注意計算公式的調整(本公司提供 YIJI 線粒體溶解試劑盒 GMS10018 為后續的線粒體蛋
白濃度測定的預處理試劑盒和 YIJI Bradford 蛋白質濃度定量試劑盒 GMS30030.1)
12.樣品特異活性是指寡霉素敏感的 ATP 合成酶,去除其它干擾因素(例如復合物 I/II/III/IV 等)
13.線粒體呼吸鏈復合物 V 酶活性單位濃度定義:在 30℃溫度下,pH 7.5 條件下,每分鐘內能夠氧化 1 微
摩爾還原型煙酰胺腺嘌呤二核苷酸(NADH)所需的酶量作為一個活性單位
14.本公司提供系列線粒體及其酶類技術產品
質量標準
1. 本產品經鑒定性能穩定
2. 本產品經鑒定檢測準確

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